Por “espesor” de una transferencia western, supongo que te estás refiriendo a uno de los anteriores:
a) El grosor de una banda de peso molecular en el gel en sí, como las bandas de actina SDHA / B que se muestran a continuación en negro. Cuanto más gruesa / oscura sea la banda, más indicativo es de un nivel más alto de una proteína de ese peso molecular particular en esa muestra. (es decir, si el carril 8 tiene una banda muy gruesa y comparada con el carril 5, puede tener un mayor nivel de proteína asumiendo niveles similares de genes de mantenimiento).
O
b) El espesor del gel de resolución en sí (es decir, 5%, 7,5%, 10%, etc.)
Western blot utiliza dos tipos diferentes de gel de agarosa: gel de apilamiento y separación. El gel de apilamiento superior es ligeramente ácido (pH 6,8) y tiene una concentración de acrilamida más baja, lo que lo convierte en un gel poroso que separa las proteínas de forma deficiente, pero que les permite formar bandas delgadas y claramente definidas. El grosor de esta capa de apilamiento suele ser constante al 5%
El gel inferior, llamado gel separador o de resolución, es básico (pH 8,8) y tiene un contenido variable de poliacrilamida: un contenido más alto de poliacrilamida estrecharía los poros del gel y haría que el gel sea más grueso, separando más las proteínas por lo tanto, por su tamaño en este gel como las proteínas más pequeñas para viajar más fácilmente, y por lo tanto rápidamente, que las proteínas más grandes.
O
c) La cantidad de espacio entre las placas de gel (1.0mm / 1.5mm)
Un espacio más grande entre las placas de gel (1.5 mm) permitiría que los pozos más grandes y, por lo tanto, más muestra que se carga en comparación con un 1.0 mm esto tiende a dilucidar ciertos efectos biológicos con mayor claridad