Cómo leer los resultados del gel de electroforesis? Cuáles son algunos ejemplos

La electroforesis en gel es un proceso mediante el cual, usando corrientes eléctricas en un medio de gel, las moléculas se pueden clasificar en función del tamaño, la polaridad o la carga. Hay tres principales protocolos generales para la electroforesis, la mancha del norte, la mancha del sur y la mancha del oeste. El propósito de estos protocolos es separar ARN, ADN y proteínas, respectivamente. Los borrones norte y sur funcionan de maneras bastante similares.

En ambos casos, el gel se prepara de antemano en un tanque de electroforesis. Se coloca un peine en el tanque para que se produzcan pequeñas hendiduras, llamadas pozos, en el gel a medida que se solidifica.

el ácido nucleico se trata para hacerlo fluorescente bajo luz UV. La muestra se vierte en los pozos. Al menos un pozo, quizás más dependiendo de la cantidad de muestras que esté ejecutando, está reservado para un “estándar”, una solución que contiene moléculas de tamaño conocido, que se puede usar para estimar el tamaño de las moléculas en su muestra. Cuando se enciende la máquina, se aplicará una carga eléctrica al gel, lo que provocará que los grupos de fosfato cargados negativamente en los ácidos nucleicos se muevan a través del gel en la dirección del terminal positivo. Las cadenas más largas de ADN o ARN se moverán más lentamente que las cadenas más cortas, lo que dará como resultado una separación de las moléculas en función de su tamaño. El resultado final será una serie de líneas en el gel, como esta.

A la izquierda tienes tu estándar. En cada otro carril, ha ordenado montones de ADN separados por tamaño. Si sabe qué estándar se está utilizando, puede comparar la ubicación de las líneas en su muestra con la ubicación de las líneas en su estándar para estimar el tamaño de cada fragmento de ADN.

Ahora, ¿por qué es esto útil? Bueno, es una buena forma de comparar el ADN. Ver, hay enzimas, llamadas enzimas de restricción, diseñadas para cortar el ADN en una secuencia particular, llamada sitio de restricción. Si arrojas ADN con algunas enzimas de restricción conocidas, cortarán ese ADN en fragmentos de diferentes tamaños, dependiendo de dónde se encuentren los sitios de restricción. Dado que los individuos varían en las ubicaciones de sus sitios de restricción, diferentes individuos producirán fragmentos de diferentes tamaños. Esta es una de las formas en que se realizan prácticas como el análisis forense de ADN y las pruebas de paternidad. Digamos que tenemos muestras de ADN de la escena del crimen y cuatro posibles sospechosos.

Bueno, Bob, Sue y Lisa pueden ser descartados inmediatamente. Sus muestras no coinciden con la muestra de la escena del crimen. John lo hace. Eso no significa que pueda estar 100% seguro de haber cometido el crimen basándose únicamente en la evidencia de ADN. Un familiar cercano puede compartir varios de sus sitios de restricción, por ejemplo, y no se prueban todos los posibles sitios de restricción. Sin embargo, si tiene otra evidencia que lo hizo sospechar de John, esta es una buena indicación de que probablemente sea el tipo que está buscando.

Otro uso es verificar los que trabajan en transformación y experimentos de edición genética. Si agrega un gen a un sitio en particular en un área con sitios de restricción conocidos, puede verificar que la transformación fue exitosa cortando el ADN con enzimas de restricción y ver si el fragmento donde intentó insertar su gen aumentó o no. Si es del mismo tamaño, no hay ADN añadido y tu transformación no se realizó. Si es más largo, eso significa que el ADN que agregaste ingresó allí y tu transformación fue exitosa.

Aquí tenemos un vector plasmídico utilizado para hacer que las bacterias brillen en la oscuridad. Se divide con dos enzimas diferentes, primero por separado y luego juntas. Si este plásmido es absorbido por la bacteria que intentas transformar, entonces deberías esperar ver estas líneas si digieres la muestra con las mismas enzimas, junto con las otras líneas producidas por el resto del genoma bacteriano. Si estas líneas no están allí, probablemente su plásmido no esté presente en la muestra y la transformación haya sido un fracaso. Por supuesto, en este caso sabrá si tuvo éxito porque su plato se vería así:

Las transferencias Western son más complicadas que las transferencias Northern o Southern porque no todas las proteínas se cargan de la misma manera. Interpretarlos, por esta razón, requiere mucha más habilidad y experiencia que los borrones discutidos anteriormente. Habilidad y experiencia que en gran medida no tengo. Puedo decir que el proceso general es similar al descrito anteriormente. El gel se prepara, las proteínas se desnaturalizan, se tratan para que brillen y se vierten en los pocillos. Se moverán según su tamaño y su carga. A diferencia del ADN y el ARN, las diferentes proteínas pueden moverse en diferentes direcciones oa velocidades variables según el grado y el tipo de carga que poseen.

Esta pregunta es un poco ambigua, ya que la interpretación dependería del propósito original de ejecutar un gel en primer lugar. La premisa de la electroforesis en gel es purificar una muestra de ADN, ARN o proteínas por tamaño y carga. Si se purifica un producto de PCR, se necesitaría conocer el tamaño del producto esperado y luego observar una banda en ese lugar para indicar que se hizo el producto deseado. Para verificar el tamaño correcto, se debe usar algún tipo de escalera (1 kb DNA Ladder | NEB) para dilucidar el tamaño. Si tuviera que ver bandas en ubicaciones distintas al producto esperado, entonces la interpretación de los resultados sería que la PCR falló.

La electroforesis en gel es una técnica analítica utilizada para separar muestras de ADN, ARN o proteínas, bajo la influencia de la corriente eléctrica. La separación de estos componentes generalmente ocurre en función de sus tamaños. Existen diferentes tipos de técnicas de electroforesis en gel según las aplicaciones. Pero el principio básico sigue siendo el mismo. Utiliza una matriz porosa (gel) formada por polímeros, que se vierte en una losa horizontal o vertical. Los polímeros más comúnmente utilizados son agarosa o poliacrilamida. Las muestras a analizar se mezclan con un tinte para rastrear su movimiento en el gel y se agregan a los pozos cortados dentro de la losa de gel. El gel se coloca en una cámara de funcionamiento equipada con los electrodos positivo y negativo y se llena con el tampón de funcionamiento que facilita el paso de corriente a través del gel. La direccionalidad de la corriente aplicada es crítica en algunas aplicaciones. Finalmente, después de que las muestras hayan migrado a una distancia deseada en el gel, se visualizan usando diferentes métodos según la aplicación y la muestra que se está separando.

La electroforesis en gel de agarosa es una técnica común utilizada para la separación de ADN. El ADN es una molécula con carga negativa que va del electrodo negativo al positivo bajo la influencia de la corriente. Las muestras de ADN se separan en función de su tamaño, con las moléculas más cortas viajando a la distancia más grande (más cerca del electrodo positivo) y las moléculas más largas que viajan menos (más cercanas al electrodo negativo). Más comúnmente, el gel se tiñe con Ethidum Bromide, que actúa como un agente intercalante y se une a las moléculas de ADN. Las muestras se visualizan bajo luz ultravioleta (UV) a medida que el bromuro de etidio fluoresce bajo luz ultravioleta. Una escalera de ADN (moléculas de ADN de longitudes conocidas) se ejecuta junto con las muestras, como referencia para comparar el tamaño de la muestra de ADN que se separa. Las aplicaciones típicas de electroforesis en gel de agarosa incluyen, análisis de digestión de restricción, detección de ADN, purificación y limpieza de PCR.

El gel desnaturalizante de poliacrilamida-urea (PAGE desnaturalizante) es otra técnica de electroforesis utilizada para el aislamiento y la purificación de ADN o ARN. Aquí la matriz de gel está hecha de poliacrilamida y urea que conduce a la desnaturalización de las muestras de ADN convirtiéndolas en moléculas monocatenarias. Las muestras se visualizan en placas de sílice usando una técnica de sombreado basada en UV. Las aplicaciones comunes incluyen la purificación de moléculas de ADN sintetizadas artificialmente, la detección de ARN y la purificación.

Las proteínas generalmente se separan en geles de SDS-PAGE. Aquí el gel de poliacrilamida contiene el detergente dodecil sulfato de sodio (SDS) que se une a la muestra de proteína, la desnaturaliza (la hace funcionar como un monómero) y confiere una carga negativa a las moléculas de proteínas. La unión del detergente cargado negativamente niega la carga intrínseca de las moléculas de proteína y provoca la separación en función de sus tamaños. Las muestras se visualizan luego teñiendo los geles con colorantes como azul brillante Coomassie. Las aplicaciones comunes incluyen verificar la expresión y pureza de proteínas.

Los geles de PAGE nativos (no desnaturalizantes) se usan en aplicaciones donde las proteínas necesitan separarse como polímeros. Además de estas técnicas simples y genéricas de electroforesis, varios procedimientos sofisticados y complejos están disponibles para aplicaciones especializadas.

La electroforesis en gel separa las moléculas en función del tamaño y / o la carga. Este es prácticamente el único uso para la electroforesis en gel. Puede usar un gel para determinar el tamaño de un fragmento de ADN o una molécula de proteína, por ejemplo. También puede usar la electroforesis en gel para determinar la carga neta de una proteína también.

La lectura de los resultados de la electroforesis requiere el uso de un estándar de tamaño que permite determinar qué tan lejos viajarán los fragmentos de un tamaño particular en un gel. Esta información se puede usar para determinar el tamaño de fragmentos desconocidos.

Los geles pueden emplearse para hacer cosas muy útiles como lo fueron en el pasado en el caso de la secuenciación del ADN. Los geles todavía separan las moléculas en función del tamaño (la relación carga a masa es 1: 1 en el ADN), pero se pueden establecer las reacciones de modo que la información de la secuencia de ADN pueda determinarse a partir de los resultados, aunque las secuencias generalmente no más.

Por lo general, se pipetea un estándar para el (los) material (es) que se pasa a través de uno o más de los pozos y se ejecuta con ellos. Una vez que el (los) material (es) y el estándar han terminado de ser procesados, pueden ser comparados.

Tome la imagen de arriba como un ejemplo: el estándar es el conjunto de líneas más a la izquierda, y los materiales en este caso son plásmidos. El estándar sirve como una medida para la longitud (en kilobases) del ADN del plásmido. Sin él, sería imposible que alguien supiera sus longitudes específicas. Sin embargo, serían capaces de averiguar contando el número de líneas emergidas cuántas piezas diferentes había en el material.

Electroforesis

Para leer sus resultados, use marcadores estándar de tamaño conocido. Existen diferentes estándares disponibles en el mercado que varían en diferentes kb. Si trabajas con ADN, elige la escalera en consecuencia. Al comparar con la banda estándar que varía en diferentes lugares, puede leer el valor del par de base de su producto. Nota Para leerlo necesita un gel Doc o un iluminador y no olvide utilizar bromuro de etidio en el Gel que se intercala con el producto y se ilumina mientras usa el iluminador.

En el gel de electroforesis hay una banda de escalera. Ladder es la secuencia de ADN / proteína de tamaño conocido que se ejecuta adyacente a la muestra. La escalera actúa como la referencia por la cual podemos conocer el tamaño preciso de nuestra muestra.