¿Por qué algunos anticuerpos funcionan solo en técnicas específicas y otras no cuando se detecta la misma proteína?

La mayoría de los anticuerpos que encuentro se pueden usar indistintamente para diferentes técnicas de detección. Sin embargo, hay algunos anticuerpos que se pueden usar específicamente para ciertas técnicas.

Algunas de las razones por las que puedo pensar son las siguientes:

  1. Afinidad de unión. La cantidad de anticuerpos que se agregan puede diferir enormemente entre técnicas. Por lo tanto, si la afinidad de unión de un anticuerpo es baja, probablemente necesitarías más anticuerpos. El volumen total de anticuerpos que necesita agregar luego, a su vez, se convierte en un factor limitante.
  2. Conjugación de anticuerpo a fluroforo. Dependiendo de su método de detección, puede necesitar que el anticuerpo se conjugue con un fluroforo o que use un anticuerpo secundario para la detección. Puede haber problemas de unión física como el bloqueo de otros anticuerpos y, por lo tanto, la restricción (esta razón es bastante vaga ya que tiene que ver con espacios físicos, que se reducen al nivel molecular, por lo tanto, no se considera un problema )
  3. El epítopo que el anticuerpo reconoce. A puede ser grande o pequeño. Pero en general, dependiendo de su técnica, la proteína puede estar en su estado nativo (plegado) o desnaturalizado. Por lo tanto, el epítopo importa. Si el anticuerpo solo reconoce el epítopo que se encuentra en la superficie de la proteína plegada, en condiciones de desnaturalización, el anticuerpo no funcionará y viceversa.
  4. Condiciones experimentales. Al igual que en el punto 3, dependiendo de las condiciones de la técnica utilizada, por ejemplo, pH o niveles de sal, la unión de algunos anticuerpos se verá afectada y, por lo tanto, dificultará la detección.

En general, verifique las especificaciones técnicas de la proteína y cumpla con lo que recomiendan los fabricantes. Esto aumentará las posibilidades de una detección exitosa de la proteína de interés que está buscando. Si no es así, en lugar de solucionar problemas, es mejor que te cambies a otro anticuerpo para ahorrar tiempo.

Esta es una buena pregunta que confunde a los investigadores de todo el mundo cuando ordenan anticuerpos. La respuesta más simple es que el antígeno objetivo puede estar desnaturalizado o ser inaccesible según la técnica o la preparación. Algunas técnicas, como la citometría de flujo, la proteína todavía está en su estado nativo en la superficie de la célula, mientras que los procedimientos de transferencia Western dan como resultado la desnaturalización completa.

El anticuerpo que se emplea puede unirse a un epítopo lineal o conformacional. Si el epítopo es lineal y está expuesto en la superficie de la proteína en su estado nativo, hay una mayor probabilidad de que el anticuerpo trabaje en múltiples aplicaciones.

Por ejemplo, es bastante común que los anticuerpos no detecten blancos especialmente en IHC, donde podrían funcionar en la transferencia Western. En el western blot, la proteína se desnaturaliza (no se pliega) mientras que en IHC está más cerca de su forma nativa.

Los anticuerpos comerciales pueden no estar validados para una aplicación en particular. Lo mejor es validar un anticuerpo antes de cualquier experimento de Western blot o IHC o cualquier otra aplicación.

Consulte más información sobre las validaciones de anticuerpos aquí:

¿Por qué la Validación de Anticuerpos es Importante? | Antibodyplus

Sobre todo si el epítopo es lineal o está plegado o no.

Algunas técnicas requieren linealización de la proteína diana y otras no.