¿Cuáles son algunos consejos y sugerencias para diseñar cebadores de ADN?

Piense para qué es exactamente lo que desea utilizar para los imprimadores, diseñe con cuidado y vuelva a verificar su trabajo (o si aún no está seguro, solicite a alguien que lo revise dos veces).

Considere el contexto: dada su plantilla, ¿su imprimador podrá enlazarse en lugares distintos al sitio deseado?

Intente, si es posible, incluir al menos un G o C en o cerca del extremo 3 ‘(el par de base G / C es más estable, y esto puede ayudar en la unión específica del cebador).

Considere usar un programa de análisis computarizado para verificar sus cebadores para estructuras secundarias estables, dimerización, etc. Página en idtdna.com – IDT tiene un recurso bastante bueno en línea para estos.

Si usa estos cebadores para PCR, intente asegurarse de que sus Tm estén relativamente cerca uno del otro, dentro de 3 o 5 grados.

Si utiliza estos cebadores para la PCR con la intención de digerir el producto de la PCR y usarlo para la clonación, tenga en cuenta que muchas enzimas de restricción no cortan secuencias cerca del final de un fragmento; puede que tenga que agregar algunas bases adicionales a la 5 ‘fin de tu primer. Aquí hay un buen recurso para observar la eficacia de varias enzimas: escisión cerca del final de los fragmentos de ADN

Intenta, intenta de nuevo. La síntesis de oligonucleótidos es cada vez más barata. Si su primer intento de diseñar cebadores no funciona, pruebe las condiciones de optimización (los PCR de gradiente son una cosa hermosa), pero también considere pedir oligos nuevos.

Las cosas como la clonación y el diseño de cebadores son casi más un arte o una ciencia: todos desarrollan sus propios pequeños caprichos y usan “lo que funciona mejor para ellos”. ¡No tengas miedo de experimentar hasta que lo hayas resuelto!

Hay muchos recursos en línea para ayudarlo con esto. Personalmente, cuando compro oligos, generalmente compro de Integrated DNA Technologies (IDT) que tiene una serie de herramientas en línea que pueden ayudarlo con este proceso.

En general, sin embargo:

  1. Diseña tus cebadores de PCR para que sean lo suficientemente específicos, generalmente alrededor de 25 nucleótidos (4 en el número de bases te dará una idea de la especificidad estadística del cebador. En general, deberían tener 20-30 bases de longitud. son más específicos.
  2. Asegúrese de que la temperatura de fusión (Tm) de los cebadores se encuentre dentro de los 5 ° C entre sí.
  3. Intente diseñar sus imprimadores con una Tm de al menos 55, pero no más de 70 ° C.
  4. Dispara para un mayor contenido de GC. El contenido de GC de cada cebador idealmente debería ser de alrededor del 50-60% para el mejor recocido. Intente organizar grupos de GC en los extremos 5 ‘y 3’ del cebador.
  5. Evite tramos largos de nucleótidos únicos o secuencias repetidas cortas.
  6. Mire nuestras estructuras secundarias … que son cebadores que se aparean entre sí o entre sí. Las estructuras secundarias, como las horquillas y los dímeros de cebadores, competirán con la plantilla por el uso de cebadores y enzimas.

Las empresas como IDT hacen que este proceso sea muy fácil y pueden ayudarlo con muchas de las recomendaciones anteriores.

Para explicar la especificidad, PrimerBLAST (disponible gratuitamente en el sitio web de NCBI) le informará sobre todos los productos no específicos que el conjunto de cebadores que ha diseñado puede amplificar además del producto deseado. (Puede darle dos secuencias de cebadores y el organismo con el que trabajará con ADN, y buscará en el genoma de ese organismo otros lugares a los que estos cebadores puedan unirse.) Mire la lista: ¿parece que su conjunto de cebadores amplificará una producto que no sea el que desea, ¿y es de tamaño similar? Si es así, use diferentes cebadores. Dependiendo de lo que esté haciendo con estos iniciadores, es posible que no le interesen algunos productos potencialmente inespecíficos: por ejemplo, si su producto deseado es de 600 pb y el producto no específico potencial es de 3 kb, el tiempo de extensión de su PCR no será suficiente para hacer esto. Además, si está purificando su producto de PCR para clonación y no puede andar haciendo un producto inespecífico, puede purificar con gel su producto de PCR siempre que esté separado por lo menos 100 pb (para la mayoría de las habilidades de disección de gel de las personas). Sin embargo, si está haciendo RT-PCR, es absolutamente esencial que solo obtenga un producto.