¿Se puede usar CRISPR terapéuticamente en humanos?

Sí, pero hay algunos desafíos, como lo expliqué en una respuesta anterior sobre el uso de CRISPR como terapia rejuvenecedora en Quora, pero profundizaré más utilizando material de un blog que escribí para Desktop Genetics. Básicamente, es un ejemplo de cómo CRISPR ya se está utilizando para candidatos a terapia, lo que también demuestra por qué la secuenciación del genoma completo va de la mano cuando se trata de crear una estrategia de medicina de precisión viable para el campo.

La publicación original está disponible aquí (y también tiene algunas actualizaciones).

El “CRISPR personalizado” es una frase general que utilizamos para tratar dos escenarios donde los investigadores aprovechan la tecnología de secuenciación de ADN junto con la edición del genoma:

  1. Realizar la secuenciación del genoma completo (WGS) de una línea celular específica con el fin de diseñar un enfoque CRISPR personalizado que represente las mutaciones y el genoma únicos de una célula.
  2. Secuenciar células de pacientes para diseñar sgRNAs altamente específicos para terapias que modifican las células de una manera clínicamente relevante sin introducir efectos fuera del objetivo.

Estos dos escenarios son similares desde una perspectiva técnica. Ambos requieren las mismas herramientas de software y hardware, una buena informática de diseño de guías y el equipo de secuenciación correcto, así como una cartera bioinformática CRISPR que crea un conjunto ideal de guías para un objetivo específico en un caso de uso específico (por ejemplo, una célula de paciente enferma o línea celular en un laboratorio). Es primordial encontrar guías que reduzcan el objetivo mientras evitan los impactos no deseables fuera del objetivo; su ubicación o naturaleza variará en función de la célula y su genoma, que siempre tiene un grado de divergencia con respecto al genoma de referencia.

Esta personalización, o adaptación, de CRISPR no solo es útil para los ~ 50,000 científicos que utilizan CRISPR hoy en día en I + D (donde una mayor precisión ahorra tiempo y dinero y proporciona una gran ventaja a la precisión científica), sino también para los médicos que algún día podrían usarlo para tratar a los 380 millones de pacientes con enfermedades genéticas o virales raras.

Ayer, un equipo de la Universidad de Temple en Ciencias publicó un interesante estudio preclínico. Demostraron una prueba de concepto importante de que una célula T CD4 + humana con un genoma de VIH integrado puede ser dirigida con uno o dos sgRNAs para eliminar completamente el genoma viral de las células hospedadoras, sin casi hablar de efectos fuera del objetivo (Kaminsky et al. 2016). Este es un trabajo alucinante que hemos estado esperando con aliento cebado. Representa una nueva vía terapéutica para curar una pandemia que ha afectado a 79 millones de pacientes desde 1981.

También es el primer documento (que sepamos) que utiliza específicamente la frase “CRISPR personalizados”. Reconocemos que varios documentos han discutido el uso de CRISPR en el desarrollo de terapias personalizadas (ver a continuación), pero este artículo presenta el término CRISPR personalizado debido a un requisito para que los diferentes sgRNAs se diseñen para dirigirse a cualquiera de los nueve distintos Subtipos de VIH o numerosas cepas variantes recombinantes de las que se deriva el virus integrado.

Aunque el equipo de Temple se centró en una cuasiespecie específica del VIH-1, el método que utilizaron para construir su modelo de datos y eliminar las células T CD4 + del VIH in vitro probablemente sea representativo de cómo esto también podría hacerse en los pacientes. Específicamente, utilizaron la secuenciación del genoma completo para verificar la ubicación del ADN proviral integrado, que no solo les informó (y en el futuro, un investigador o clínico) sobre qué tipo de cepa del VIH estaban tratando, sino que también les proporcionó el conjunto de datos necesarios para ejecutar un análisis completo fuera del objetivo. Este riguroso interrogatorio es único porque considera el genoma único del paciente (o en este caso, la línea celular).

Además de servir como un estándar de oro de diagnóstico, el análisis WGS también sirvió como el paso más importante para garantizar que se eviten los efectos fuera de objetivo, y que el sistema CRISPR / Cas9 solo se dirigió al genoma viral. También le permitió al equipo diseñar guías dirigidas a la cepa específica del VIH. Para pacientes coinfectados (o superinfectados) con más de un tipo de VIH, presumiblemente las guías podrían diseñarse contra múltiples cepas.

Sin embargo, cuando hablamos de prácticas contemporáneas de CRISPR, sabemos por nuestras propias conversaciones con los usuarios de la plataforma DESKGEN y nuestros clientes que la gran mayoría de los investigadores tiende a utilizar el genoma de referencia como base de su búsqueda no objetivo, no el genoma específico de la línea celular con la que están trabajando. Aunque esto todavía obtiene resultados, de ninguna manera es suficiente para la confianza clínica o científica y los riesgos confunden el análisis fuera del objetivo. Un WGS antes de seleccionar guías es el ideal. De hecho, los autores comentan sobre el “análisis integral” que se realiza a un nivel de detalle sin precedentes, mediante la secuenciación del genoma completo “.

Para su crédito, los efectos fuera del objetivo de CRISPR fueron inexistentes o mínimos dependiendo de los criterios de análisis. Ninguno de los indeles detectados en las células con el genoma del VIH-1 escindido se encontraba dentro de los 60 pb de cualquiera de los sitios previstos fuera del objetivo, según lo predicho por los criterios de búsqueda que permiten hasta siete desajustes. No obstante, al expandir la búsqueda a sitios fuera del objetivo dentro de 600 o 1200 pb, se identificaron sitios relativamente extraños fuera del objetivo, incluidos varios desajustes y longitudes alineadas en todo el genoma. Después de establecer la restricción en una coincidencia perfecta con la secuencia de semilla de 12 pb más el motivo NRG PAM, ninguno de los indels cayó dentro del área de búsqueda de 60-1200 pb de un sitio fuera del objetivo previsto. Tenga en cuenta que esto no tiene en cuenta las visitas fuera del objetivo fuera de ese rango de búsqueda; esto es algo que nos gustaría ver explorado con más detalle.

Una pregunta que los médicos tendrán que hacerse será si estos toques mínimos fuera del objetivo pueden ser tolerados en los pacientes (es decir, si es “lo suficientemente seguro”). Observamos que el equipo usó hSpCas9, por lo que hay mucho espacio para optimizar la técnica al cambiar el ortólogo Cas9 por uno con menos efectos fuera del objetivo, como el eSpCas9 (Slaymaker et al., 2015) o el SpCas9-HF1 (Kleinstiver). et al. 2016). Sin duda, la presencia de objetivos no seleccionados, independientemente de los criterios utilizados, sugiere que hay más trabajo por hacer para crear un tratamiento categóricamente seguro que pueda usarse de manera confiable tanto en pacientes como en líneas celulares.

Mientras tanto, el resultado más importante de este documento es una demostración de la extirpación completa del genoma proviral del VIH utilizando solo dos sgRNA dirigidos a dos sitios. Este es un trabajo increíble.

Nos gusta pensar en CRISPR como un láser quirúrgico nanoscópico, un instrumento preciso que engaña a la maquinaria de reparación de una célula para encontrar y modificar un elemento funcional del ADN de alguna manera. Diseñar la estrategia de corte utilizando una secuencia de genoma completo de la célula le permite considerar cada variación única para garantizar un corte de ADN preciso. El equipo de Temple ha hecho un excelente trabajo y estamos encantados de trabajar en un campo en el que se realizan tantos logros emocionantes todos los días.

Si desea ayuda para diseñar una estrategia de edición del genoma específica de la línea celular o “personalizada CRISPR”, póngase en contacto y podemos hacerlo realidad.

NUEVA LECTURA SOBRE CRISPR PERSONALIZADO

  1. Información suplementaria del estudio de Temple University
  2. Medicina de precisión: reparación genética de la retinitis pigmentosa en células madre derivadas de pacientes
  3. Edición de genoma mediado por CRISPR / Cas para tratar el cáncer de pulmón mutante EGFR: una terapia quirúrgica molecular personalizada

FUENTES

Bassuk AG, Zheng A, Li Y, Tsang SH, Mahajan VB. Medicina de precisión: reparación genética de la retinitis pigmentosa en células madre derivadas de pacientes. Sci Rep. 2016 27 de enero; 6: 19969. doi: 10.1038 / srep19969. PubMed PMID: 26814166; PubMed Central PMCID: PMC4728485.

Kaminski R, Chen Y, Fischer T, Tedaldi E, Napoli A, Zhang Y, Karn J, Hu W, Khalili K. Eliminación de genomas de VIH-1 de células T-linfoides humanas por CRISPR / Cas9 Gene Editing. Sci Rep. 2016 Mar 4; 6: 22555. doi: 10.1038 / srep22555. PubMed PMID: 26939770; PubMed Central PMCID: PMC4778041.

Kleinstiver BP, Pattanayak V, Prew MS, Tsai SQ, Nguyen NT, Zheng Z, Joung JK. Nucleasas de CRISPR-Cas9 de alta fidelidad sin efectos detectables del objetivo fuera del objetivo del genoma. Naturaleza. 2016 28 de enero; 529 (7587): 490-5. doi: 10.1038 / nature16526. Epub 2016 Ene 6. PubMed PMID: 26735016; PubMed Central PMCID: PMC4851738.

Slaymaker IM, Gao L, Zetsche B, Scott DA, Yan WX, Zhang F. Racionalmente modificados con nucleas Cas9 con especificidad mejorada. Ciencia. 2016 1 de enero; 351 (6268): 84-8. doi: 10.1126 / science.aad5227. Epub 2015 1 de diciembre. PubMed PMID: 26628643; PubMed Central PMCID: PMC4714946.

Smith DM, Richman DD, Little SJ. Sobreinfección por VIH. J Infect Dis. 2005 1 de agosto; 192 (3): 438-44. Epub 2005 30 de junio. Revisión. PubMed PMID: 15995957.

Tang H, Shrager JB. Edición de genoma mediado por CRISPR / Cas para tratar el cáncer de pulmón mutante EGFR: una terapia quirúrgica molecular personalizada. EMBO Mol Med. 2016 8 de enero; 8 (2): 83-5. doi: 10.15252 / emmm.201506006. PubMed PMID: 26747090; PubMed Central PMCID: PMC4734839.

Wang G, Zhao N, Berkhout B, Das AT. CRISPR-Cas9 puede inhibir la replicación de VIH-1, pero la reparación de NHEJ facilita el escape de virus. Mol Ther. 2016 Mar; 24 (3): 522-6. doi: 10.1038 / mt.2016.24. Epub 2016 22 de enero. PubMed PMID: 26796669; PubMed Central PMCID: PMC4786927.

Foto: CDC / C. Goldsmith, P. Feorino, EL Palmer, WR McManus || Dominio publico

Actualmente no, y es muy posible que nunca sea utilizable en humanos.

En lo que respecta a las tecnologías de edición de genes, CRISPR es simple de diseñar porque solo necesita dos componentes para funcionar: una proteína de nucleasa CRISPR (generalmente Cas9 recombinante de la especie bacteriana S. pyogenes ) y un trozo corto de ARN. El ARN se carga en la nucleasa y le otorga la especificidad para editar las regiones diana del ADN.

Esto se puede utilizar para romper una secuencia existente, insertar una nueva secuencia en un sitio definido o reemplazar una secuencia existente por algo nuevo. Eso suena increíblemente poderoso, ¿verdad? Esas son todas las operaciones requeridas para hacer que el genoma sea completamente plástico y personalizable, entonces, ¿por qué la tecnología no se usa terapéuticamente?

Todavía hay una gran cantidad de obstáculos técnicos que deben superarse antes de que podamos siquiera considerar el uso de CRISPR directamente en humanos. Incluso si se superan estos obstáculos, la compleja biología de muchas enfermedades no se entiende bien o es demasiado complicada como para ser tratada de manera efectiva por CRISPR. Voy a intentar una lista completa de estos problemas a continuación.

CRISPR no es suficientemente preciso para dirigirse solo a la secuencia deseada. Debido a que CRISPR se basa en el emparejamiento de bases entre el ARN de la nucleasa y el ADN objetivo, existe la posibilidad de efectos fuera del objetivo. En condiciones fisiológicas, los pares entre una molécula de ARN y una molécula de ADN todavía se pueden formar incluso con unas pocas bases que no coinciden. Esto significa que se pueden hacer cortes en ubicaciones no intencionadas del genoma, introduciendo mutaciones potencialmente dañinas. Si bien se han realizado grandes mejoras en la especificidad de las endonucleasas Cas9 en los últimos años, todavía no podemos alcanzar el 100% de precisión: el riesgo de mutaciones aún existe.

CRISPR se basa en las vías de reparación del ADN realizadas por la célula que son ineficientes y propensas a errores. CRISPR esencialmente funciona rompiendo el ADN de la célula y obligando a la célula a reparar la ruptura. Las aplicaciones más potentes de CRISPR requieren la inserción de nuevo ADN en el genoma, que se basa en una familia de vías de reparación del ADN llamada recombinación homóloga. Estas vías son lentas, ineficientes y, en general, solo están activas en células que se dividen activamente. En condiciones de laboratorio, la edición del genoma mediado por recursos humanos funciona en aproximadamente el 10% de las células objetivo de CRISPR. En la mayoría de las celdas donde no se realizó la edición deseada, no le pasó nada al genoma, pero una minoría de celdas llevará una edición incorrecta que es esencialmente una mutación. A diferencia de Cas9, no podemos optimizar fácilmente las vías de reparación del ADN porque incluyen muchas proteínas que “pertenecen” a la célula.

La administración de reactivos CRISPR a células específicas es extremadamente desafiante. CRISPR no puede hacer nada a menos que tanto la proteína de nucleasa como el ARN entren en las células. La introducción de proteínas y ARN en las células requiere esencialmente inyecciones directas de ambas en las células deseadas, lo cual es invasivo y técnicamente desafiante. La forma más común de entrega de estos reactivos en condiciones de laboratorio es mediante la inserción del ADN que codifica ambas piezas en las células. Esto se hace mediante transfección química tóxica (no es una opción en los tejidos humanos), o mediante la infección con virus que portan el ADN de interés, que luego puede ingresar a las células. La infección de células específicas es extremadamente desafiante, y la infección en general se ve obstaculizada por nuestro sistema inmunológico. Por lo tanto, la administración de reactivos CRISPR a los tejidos en seres humanos sigue siendo técnicamente imposible.

Confirmar que las ediciones correctas se han producido en las ubicaciones correctas requiere ensayos destructivos. Dado el potencial de modificaciones inexactas por las vías descritas anteriormente, es necesario determinar que las ediciones se han realizado con éxito. Esto requiere secuenciación o investigación de ADN celular, lo cual solo se puede hacer destruyendo las células que lo contienen. Para las terapias que se dirigen a muchas células en un tejido grande, esto no debería ser un problema, pero muchas enfermedades ocurren en células muy específicas. Extraer y destruir estas células sería bastante dañino.

Las ediciones inexactas son efectivamente irreversibles. Una vez que se realiza una edición incorrecta, la única forma de revertirla es mediante una edición de genoma más mediada por CRISPR. Dado que la orientación de una secuencia a través de miles de millones o billones de células puede producir múltiples ediciones incorrectas diferentes, cada ronda de edición CRISPR aumenta el conjunto de posibles mutaciones. La corrección de ediciones incorrectas requeriría varias rondas de ediciones de corrección, cada una de las cuales podría requerir múltiples rondas de ediciones de corrección propias. Si se requiere volver a guardar el genoma “perfecto” para la edición deseada en todas las celdas, la cantidad de ediciones necesarias se acercará rápidamente al infinito. Por lo tanto, no podemos corregir ediciones incorrectas, y esencialmente tenemos que esperar que no tengan ningún efecto negativo.

CRISPR puede dirigirse a un gen a la vez. Incluso si se abordan todos los problemas imprecisos de orientación y reparación de CRISPR, sigue siendo una tecnología que solo es capaz de modificar un gen por edición. Muchas enfermedades están influenciadas por decenas o cientos de genes, que potencialmente requieren cambios en cada uno. Hacer todas las ediciones deseadas a la vez requeriría suficientes roturas de ADN bicatenario en las células que probablemente las haga entrar en pánico y morir, por lo que las enfermedades multigénicas se deben editar secuencialmente . Incluso esto supone que entendemos la base de la enfermedad compleja, que en muchos casos no lo hacemos.

Para qué sirve CRISPR terapéuticamente es útil la edición de células madre que se han eliminado de un paciente, y luego reintroducir esas células para reemplazar los tejidos dañados. Sin embargo, nuestro control de las células madre es actualmente bastante rudimentario, y muchas enfermedades no se pueden abordar con este método.

CRISPR es una tecnología increíblemente útil, pero no es la bala de plata de la biología molecular lo que la prensa popular a menudo hace.

PODRÍA, tarde o temprano. Este video muestra cómo CRISPR podría usarse contra diferentes tipos de herpesvirus, por ejemplo. Y un Q & Q con el autor CRISPR lucha contra los herpesvirus persistentes: una breve animación | Hablando de medicina

Espero que esto ayude